Способ выделения и активации консорциума аборигенных микроорганизмов-деструкторов нефти и нефтепродуктов. Аборигенная микрофлора нефти


Способ выделения и активации консорциума аборигенных микроорганизмов-деструкторов нефти и нефтепродуктов

Изобретение относится к биотехнологии. Способ включает отбор проб с нефтезагрязненных почв и грунтов, выделение консорциума аборигенных нефтеокисляющих микроорганизмов, причем после выделения проводят активацию консорциума аборигенных нефтеокисляющих микроорганизмов с использованием смеси биотрина с отходом спиртового производства - барды, при соотношении компонентов 1:1 в количестве не менее 0,01 мас.%. Изобретение позволяет сократить продолжительность выделения аборигенных нефтеокисляющих микроорганизмов-деструкторов, упростить технологию наработки биомассы штаммов-деструкторов. 6 ил., 4 табл.

 

Изобретение относится к области охраны окружающей среды и может быть использовано при восстановлении нефтезагрязненных земель.

Способ включает отбор проб с нефтезагрязненной почв и грунтов, выделение ассоциации активных аборигенных штаммов-деструкторов нефти и нефтепродуктов, активацию полученной ассоциации и дальнейшую наработку биомассы ассоциации в ферментерах при оптимальных параметрах культивирования. Способ повышает вероятность поиска наиболее активных представителей углеводородокисляющих микроорганизмов для очистки конкретного участка нефтезагрязненных земель, позволяет сократить затраты на производство и транспортировку биопрепаратов.

Известно, что в почве и грунте, особенно загрязненной нефтью и нефтепродуктами, содержатся аэробные штаммы, способные биотрансформировать нефть и нефтепродукты. Среди них часто встречаются микроорганизмы родов Arthrobacter, Rhodococcus, Pseudomonas, Bacillus и др.

Известно использование биопрепаратов на основе активных штаммов-деструкторов нефти и нефтепродуктов [А.с. СССР №1076446, кл. C12N 15/09, 1978, патент РФ №2019527, кл. C02F 3/34, E02B 15/04, 1993, патент РФ №2142996, кл. C12N 1/26, C02F 3/34, В09С 1/10, 1999]. Недостатками этих способов являются продолжительность времени, необходимого на наработку биопрепарата, высокая стоимость и низкая эффективность.

Известен способ выделения деструкторов нефти и нефтепродуктов из числа аборигенных штаммов микроорганизмов [Патент РФ №2241745. Способ выделения деструкторов нефти и нефтепродуктов. Сатубалдин К.К., Салангинас Л.А.]. (прототип). Суть способа: производится отбор проб с нефтезагрязненной поверхности, затем проводится селекция углеводородокисляющих бактерий с последующим пересевом полученных культур и наработка в отдельности всех отселектированных микроорганизмов в ферментерах при параметрах культивирования, оптимальных для выделенных микроорганизмов. Недостатком известного способа является продолжительность выделения аборигенных нефтеокисляющих микроорганизмов, связанная с селекцией штаммов-деструкторов, а также сложность наработки бактериального препарата на их основе (требуется сложное аппаратурное оформление). Кроме того, не предусмотрена предварительная активация ассоциации нефтеокисляющих штаммов-деструкторов.

Задачей данного изобретения является сокращение продолжительности выделения аборигенных нефтеокисляющих микроорганизмов-деструкторов, упрощение технологии наработки биомассы штаммов-деструкторов.

Суть способа: производится отбор проб с нефтезагрязненных почвы и грунтов и выделение углеводородокисляющих микроорганизмов из образца конкретного участка нефтезагрязненной земли. Далее проводится активация полученной ассоциации с использованием смеси биодобавок биотрина и спиртовой барды, взятых в соотношении 1:1 в качестве фактора роста.

Известно, что информация на деструкцию нефти и нефтепродуктов в основном закодирована в плазмидах бактериальных клеток [Ягафарова Г.Г. Разработка биотехнологии очистки почвы и воды от некоторых хлорфенольных соединений и углеводородов нефти: Дис. на соискание уч. ст. д-ра технических наук. - Уфа, 1994]. Учитывая, что в число ассоциации аборигенных микроорганизмов будут входить как психрофильные, так мезафильные и термофильные микроорганизмы, селекция микроорганизмов не проводилась, а наработка биомассы осуществлялась при 25-30°С.

Способ осуществляется следующим образом.

На первом этапе работ проводится отбор образцов нефтезагрязненных почв и грунтов, выделение микроорганизмов-деструкторов нефти и нефтепродуктов из числа диких штаммов.

Основные операции по отбору проб осуществляются согласно ГОСТ 17.4.3.01-83 «Охрана природы. Почвы. Общие требования к отбору проб».

Для выделения микроорганизмов-деструкторов нефти и нефтепродуктов используют жидкую питательную среду Маккланга следующего состава: NaNO3 - 2,0 г/л; КН2PO4 - 1,0 г/л; MnSO4 - 0,013 г/л; MgSO4·7h3O - 0,5 г/л; ZnSO4 - 0,002 г/л; Fe2(SO4)3 - 0,001 г/л. Среду стерилизуют при 110°С в течение 30 мин.

Один грамм пробы почвы переносится в стерильную фарфоровую ступку, слегка увлажняется стерильной солевой средой и растирается до пастообразного состояния. Содержимое переносится в колбу на 250 мл (ступку и пестик ополоснуть солевой средой, перенося остаток в ту же колбу). Общий объем смеси доводится до 100 мл.

В качестве единственного источника углерода и энергии добавляют стерильный гексадекан (1 мас.%).

Культивирование проводят в качалочных колбах на термостатированной качалке при температуре 30°С и частоте вращения 100 мин-1 в течение 3 суток. Через трое суток отмечают видимые изменения в системе жидкой фазы - помутнение среды, появление пигмента, расслоение, изменение цвета и др.

Анализ состава накопительной культуры различных физиологических групп микроорганизмов производят путем высева определенных объемов воды на агаризованную среду по методу Коха.

На следующем этапе проводится активация нефтеокисляющих штаммов с помощью биогенных и минеральных добавок.

Активация проводится в жидкой минеральной среде Маккланга. Единственным источником углерода и энергии является нефть и/или нефтепродукты (гексадекан, дизельное топливо, мазут).

Для биологической стимуляции роста микроорганизмов и в качестве фактора роста используется смесь биодобавок: биотрин (ТУ 9291-001-00479994-95) и отход спиртового производства - барда, в соотношении 1:1 в количестве не менее 0,01 мас.%

Биотрин представляет собой сухой продукт, полученный микробиологическим синтезом из углеводородсодержащего сырья. Биотрин является эффективной балансирующей добавкой. Биотрин содержит в своем составе до 40-42% сырого протеина. В биотрине имеется 17 важнейших аминокислот, в том числе незаменимых, а также широкий спектр витаминов, макро- и микроэлементов. Биотрин является экологически чистым продуктом, не содержит токсических элементов.

Отход спиртового производства, барда - имеет в достаточном количестве легко растворимые азотистые соединения и полезные вещества: протеин (20-22%), жир (5-7%), клетчатках (13-18%), зола (7-8%), комплекс микроэлементов (кобальт, марганец, ванадий, железо и др.).

Процесс активации ассоциации штаммов-деструкторов проводят при температуре t=25-30°С и рН 7. Необходимо периодическое перемешивание.

На третьем этапе проводится наращивание необходимого количества биомассы полученной ассоциаци.

Глубинное культивирование ассоциации аборигенных микроорганизмов проводят в биореакторе, снабженном компрессором и мешалкой (например, 114.207.012.01.00.00 Ферментатор объемом 1 м3, материал 12Х18Н10Т ГОСТ 5632-73 с перемешивающим устройством). Поддерживают заданную температуру, рН, pO2. Культивирование проводят в полной минеральной среде Маккланга. В качестве источника углерода используют жидкие парафины, а при их отсутствии дизельное топливо или сырую нефть не менее 1 мас.% Процесс проводится при температуре t=25-30°С и рН 7 в течение 1-3 суток до достижения биомассы 0,3-0,5 мас.% При этом численность нефтеокисляющих микроорганизмов в готовой суспензии должна составлять не менее 109 клеток/мл. В процессе культивирования контролируют температуру ведения ферментации, накопление биомассы (методом КОЕ на 12 час культивирования и далее через каждые 6 часов), микрокопирование препарата ферментационной жидкости, рН.

По окончании процесса культивирования наработанную суспензию сливают в емкости и используют в качестве биопрепарата для обработки нефтезагрязненных объектов.

На 1 м2 нефтезагрязненных земель (содержание нефти до 13 мас.%) используют 1-1,5 л полученной суспензии аборигенных микроорганизмов. Для очистки нефтезагрязненных вод от нефти и нефтепродуктов суспензию ассоциации штаммов-деструкторов добавляют в биореактор для очистки сточной воды в количестве 3-5 об.%

Пример 1

С целью изучения процесса выделения аборигенных микроорганизмов из образцов нефтезагрязненных земель: Полигон Северный (Волжский р-н, п.Водино) - образец №1 (общее содержание нетфи и нефтепродуктов 3 мас.%), Дружба-1 (Безенчукский р-н, 37-й км) - образец №2 (общее содержание нетфи и нефтепродуктов 5 мас.%) или ЛПДС Самара (п.Просвет) - образец №3 (общее содержание нетфи и нефтепродуктов 10 мас.%) были проведены эксперименты в стерильной жидкой минеральной среде Маккланга.

В качестве факторов роста в первой серии опытов добавляли биотрин в количестве 0,01 мас.%, во второй серии опытов добавляли спиртовую барду в количестве 0,01 мас.%, в третьей серии опытов добавляли смесь биодобавок (биотрин:барда = 1:1) в количестве 0,01 мас.%. В качестве единственного источника углерода и энергии добавляли стерильный гексадекан в количестве 1 мас.%. В опытные колбы №1, №2 и №3 вносили по 1 г образцов техногеннозагрязненных земель №1, №2 и №3 соответственно. Для сравнения ставили аналогичные опыты без добавления биодобавок.

Культивирование проводили в качалочных колбах на термостатированной качалке при температуре 30°С и частоте вращения 100 мин-1.

О нефтеокисляющей способности аборигенной микрофлоры судили по уменьшению содержания гексадекана, приросту численности микроорганизмов и изменению рН среды.

Содержание гексадекана определяли спектрофотометрически на приборе UR-20 при 1460 см-1, предварительно экстрагируя его четыреххлористым углеродом.

Изменение рН культуральной жидкости определяли путем замера рН с помощью иономера И-130,2 М в начале и конце культивирования.

Численность микроорганизмов определяли чашечным методом Коха при высеве на агаризованную среду для гетеротрофных микроорганизмов (мясопептонный агар).

Результаты исследований представлены на фигурах 1-2 и таблице 1. После 3 суток культивирования в опытных колбах №1, 2 и 3 с добавлением биотрина и с добавлением барды наблюдалось помутнение культуральной жидкости и появление пленки.

Как видно из фигуры 1, во всех опытных колбах с биотрином и бардой наблюдалось увеличение общего количества микроорганизмов и изменение рН среды в сторону подщелачивания (таблица 1). При этом наибольший прирост микроорганизмов наблюдался в серии опытов со смесью биодобавок биотрин:барда.

Содержание гексадекана снизилось в среднем до 0,1 мас.% сериях опытов с одной биодобавкой и до 0,07 мас.% в серии опытов со смесью биодобавок (фигура 2). В контрольных колбах изменений содержания гексадекана, количества микроорганизмов и рН среды не наблюдалось.

В опытных колбах без биодобавок незначительный прирост количества микроорганизмов наблюдался лишь на 3 сутки, содержание гексадекана снизилось незначительно (до 0,7-0,9 мас.%).

Таким образом, биотрин и спиртовая барда являются активными стимуляторами роста аборигеных нефтеокисляющих микроорганизмов.

Пример 2

Для установления оптимальной концентрации смеси биодобавок биотрин:барда для активации аборигенных микроорганизмов ставили следующий опыт. В жидкую минеральную среду Маккланга добавляли стерильную нефть конкретного месторождения (Самарская обл.) в количестве 1 мас.% и различные количества смеси биодобавок (биотрин:барда = 1:1): 0,01, 0,03, 0,05, 0,10 мас.%. Для биодеградации нефти вводили суспензию ассоциации аборигенных микроорганизмов, полученную в примере 1 (образец №1) в количестве 3 об.%. Контролем служила колба без добавления биодобавок.

О биодеградации нефти судили по уменьшению ее количества, которое определяли спектрофотометрически на приборе UR-20 при 2923 см-1, предварительно экстрагируя ее четыреххлористым углеродом.

Как видно из результатов приведенных в таблице 2, степень биодеградации уже при содержании биодобавок 0,01 мас.% на 10% выше, чем без добавления биодобавок.

Таким образом, концентрация смеси биодобавок биотрина и барды в соотношении 1:1, равная 0,01 мас.%, уже достаточна для активации аборигенных микроорганизмов.

Пример 3

Для изучения процессов биодеградации нефти и нефтепродуктов были проведены эксперименты в жидкой минеральной среде Маккланга (стерильной). В качестве единственного источника углерода и энергии добавляли нефть конкретного месторождения (Самарская обл.), в количестве 1 мас.%. Для биодеградации нефти в среду вносили суспензию ассоциации активированных аборигенных микроорганизмов из нефтезагрязненных образцов (№1, №2 или №3) почв в количестве 3 об.%.

В качестве факторов роста добавляли смесь биодобавок биотрина и барды в соотношении 1:1 в количестве 0,01 мас.%. Культивирование проводили в качалочных колбах на термостатированной качалке при температуре 30°С и частоте вращения 100 мин-1. Для сравнения ставили аналогичные опыты без добавления биодобавок. Колбы с минеральной средой Маккланга, содержащие 1 мас.% нефти, но не инокулированные микроорганизмами, служили контролем.

О степени биодеградации нефти судили по уменьшению ее количества, а также косвенно по приросту численности бактерий и изменению рН среды.

Результаты исследований представлены на рисунках 1-3 и таблице 1.

Как видно из фигуры 3, биодеградация нефти произошла более чем на 90% во всех опытах с использованием активированной микрофлорой, в то время как в контрольных колбах естественная убыль нефти не превышала 5%.

При этом во всех опытных колбах наблюдалось увеличение общего количества микроорганизмов (фигура 4) и изменение рН среды в сторону подщелачивания (таблица 3). В контрольных колбах никаких изменений не наблюдалось.

Пример 4.

С целью исследования процесса биоразложения легких и тяжелых фракций углеводородов при помощи аборигенной микрофлоры с добавлением смеси биодобавок биотрина и барды в соотношении 1:1 были проведены эксперименты.

Для этого в серии опытов аборигенные штаммы микроорганизмов культивировали в стерильной минеральной среде со смесью биодобавок биотрина и барды в соотношении 1:1 (0,01 мас.%) с добавлением в качестве единственного источника углерода: гексадекан, дизельное топливо, нефть и мазут конкретного месторождения (Самарская обл.) в количестве 1 мас.%. Колбы без добавления биодобавок служили контролем.

Минеральную среду Маккланга (состав приведен выше) разливали по 50 мл в качалочные колбы объемом 250 мл и стерилизовали при 1 атм. 30 мин. Засевали из расчета 3% по объему суспензии аборигенных микроорганизмов. В качестве единственного источника углерода добавляли гексадекан, дизельное топливо, нефть или мазут в количестве 1 мас.%.

Условия культивирования описаны выше.

О биоразложении нефти и нефтепродуктов судили путем количественного анализа на спектрофотометре UR-20 при 2923 см-1 (нефти, дизельное топливо, мазут) и при 1460 см-1 (гексадекан). Предварительно нефть и нефтепродукты экстрагировали четыреххлористым углеродом

На фигуре 5 представлены результаты изучения зависимости биодеградации гексадекана, дизельного топлива, нефти, мазута в воде через 48 часов.

Из приведенных данных таблицы 4 и фигуры 5 видно, что аборигенные микроорганизмы способны использовать не только легкие фракции нефти, такие как гексадекан, но и дизельное топливо и более тяжелые фракции нефти, как мазут, т.е. разлагать широкий спектр углеводородов. Причем степень биодеградации при добавлении смеси биодобавок биотрин и барда в соотношении 1:1 в качестве стимулятора роста увеличивает степень биодеградации нефти и нефтепродуктов в среднем на 20%. Так в опытах с добавлением смеси биодобавок степень биодеградации гексадекана составила 99%, дизельного топлива 85%, нефти - 84%, мазута - 65%. В опытах без добавления биодобавок степень биодеградации составила 61; 52,8; 48,2 и 32,7% соответственно.

Пример 5

С целью определения окислительной способности аборигенной микрофлоры образцов почвы и в нефтезагрязненной почве с заданных участков исследовали 3 образца нефтезагрязненных почв и грунтов:

1. Полигон Северный (Волжский р-н, п.Водино) - образец №1.

Общее содержание нефти и нефтепродуктов 3 мас.%.

2. Дружба-1 (Безенчукский р-н, 37-й км) - образец №2.

Общее содержание нефти и нефтепродуктов 5 мас.%.

3. ЛПДС Самара (п.Просвет) - образец №3.

Общее содержание нефти и нефтепродуктов 10 мас.%.

Исследования проводили в фарфоровых чашках объемом 100 мл. В первой серии опытов 50 мг загрязненных образцов почвы обрабатывали суспензией аборигенных микроорганизмов (3 об.%), взятых с этого же образца и смесью биодобавок биотрина и барды взятых в соотношении 1:1 (0,01 мас.%). Во второй серии опытов не добавляли биодобавки. Контролем служили чашки без внесения микроорганизмов.

Очистку почвы проводили при комнатной температуре в течение 90 суток. Влажность почвы поддерживали 60% от полной влагоемкости.

О степени биодеградации нефти судили по ее остаточному количеству в почве.

Результаты исследований представлены на фигуре 6.

Как видно из результатов, приведенных на фигуре 6, активированная ассоциация аборигенной микрофлоры способна деградировать нефть и нефтепродукты в почве и грунте. Причем при обработке почвы смесью биодобавок биотрина и барды, взятых в соотношении 1:1, степень биодеградации заметно возрастает. Так для образцов почвы №1, 2 и 3 она составила 80, 75 и 64% соответственно. Без обработки биодобавками - 60, 57 и 42%.

Таблица 1Результаты измерения рН в опытных и контрольных колбах
Название опыта Начальное Через 3 суток
Образец №1 с биотрином 6,2 7,2
Образец №1 с бардой 6,2 7,2
Образец №1 без биодобавок 6,2 6,8
Образец №2 с биотрином 6,2 7,1
Образец №2 с бардой 6,2 7,0
Образец №2 без биодобавок 6,2 6,9
Образец №3 с биотрином 6,2 7,1
Образец №3 с бардой 6,2 7,1
Образец №3 без биодобавок 6,2 6,9
Контроль 6,2 6,2
Таблица 2Влияние количества смеси биодобавок на степень биодеградании нефти
Концентрация биодобавок, % 0 0,01 0,03 0,05 0,08 0,10
Степень биодеградации нефти, % 68 78 84 91 91 91
Таблица 3
Название опыта Начальное Через 3 суток
Образец №1 с биодобавками 6,2 7,0
Образец №1 без биодобавок 6,2 6,8
Образец №2 с биодобавками 6,2 7,1
Образец №2 без биодобавок 6,2 6,7
Образец №3 с биодобавками 6,2 7,1
Образец №3 без биодобавок 6,2 6,8
Контроль с биодобавками 6,2 6,2
Контроль без биодобавок 6,2 6,2
Таблица 4Динамика роста микроорганизмов в среде с углеводородами с добавлением смеси биодобавок
Вариант Количество микроорганизмов, растущих на МПА, кл/мл, час
0 24 36 48
1. Гексадекан 1·105 8·107 5·108 1·109
2. Диз. топливо 1·105 9·107 7·108 9·108
3. Нефть 1·105 8·107 3·108 5·108
4. Мазут 1·105 9·106 2·107 4·107

Способ выделения и активации консорциума аборигенных нефтеокисляющих микроорганизмов, включающий отбор проб с нефтезагрязненных почв и грунтов, выделение консорциума аборигенных нефтеокисляющих микроорганизмов, отличающийся тем, что после выделения проводят активацию консорциума аборигенных нефтеокисляющих микроорганизмов с использованием смеси биотрина с отходом спиртового производства - барды при соотношении компонентов 1:1 в количестве не менее 0,01 мас.%.

www.findpatent.ru

способ выделения и активации консорциума аборигенных микроорганизмов-деструкторов нефти и нефтепродуктов - патент РФ 2352630

Изобретение относится к биотехнологии. Способ включает отбор проб с нефтезагрязненных почв и грунтов, выделение консорциума аборигенных нефтеокисляющих микроорганизмов, причем после выделения проводят активацию консорциума аборигенных нефтеокисляющих микроорганизмов с использованием смеси биотрина с отходом спиртового производства - барды, при соотношении компонентов 1:1 в количестве не менее 0,01 мас.%. Изобретение позволяет сократить продолжительность выделения аборигенных нефтеокисляющих микроорганизмов-деструкторов, упростить технологию наработки биомассы штаммов-деструкторов. 6 ил., 4 табл.

Изобретение относится к области охраны окружающей среды и может быть использовано при восстановлении нефтезагрязненных земель.

Способ включает отбор проб с нефтезагрязненной почв и грунтов, выделение ассоциации активных аборигенных штаммов-деструкторов нефти и нефтепродуктов, активацию полученной ассоциации и дальнейшую наработку биомассы ассоциации в ферментерах при оптимальных параметрах культивирования. Способ повышает вероятность поиска наиболее активных представителей углеводородокисляющих микроорганизмов для очистки конкретного участка нефтезагрязненных земель, позволяет сократить затраты на производство и транспортировку биопрепаратов.

Известно, что в почве и грунте, особенно загрязненной нефтью и нефтепродуктами, содержатся аэробные штаммы, способные биотрансформировать нефть и нефтепродукты. Среди них часто встречаются микроорганизмы родов Arthrobacter, Rhodococcus, Pseudomonas, Bacillus и др.

Известно использование биопрепаратов на основе активных штаммов-деструкторов нефти и нефтепродуктов [А.с. СССР № 1076446, кл. C12N 15/09, 1978, патент РФ № 2019527, кл. C02F 3/34, E02B 15/04, 1993, патент РФ № 2142996, кл. C12N 1/26, C02F 3/34, В09С 1/10, 1999]. Недостатками этих способов являются продолжительность времени, необходимого на наработку биопрепарата, высокая стоимость и низкая эффективность.

Известен способ выделения деструкторов нефти и нефтепродуктов из числа аборигенных штаммов микроорганизмов [Патент РФ № 2241745. Способ выделения деструкторов нефти и нефтепродуктов. Сатубалдин К.К., Салангинас Л.А.]. (прототип). Суть способа: производится отбор проб с нефтезагрязненной поверхности, затем проводится селекция углеводородокисляющих бактерий с последующим пересевом полученных культур и наработка в отдельности всех отселектированных микроорганизмов в ферментерах при параметрах культивирования, оптимальных для выделенных микроорганизмов. Недостатком известного способа является продолжительность выделения аборигенных нефтеокисляющих микроорганизмов, связанная с селекцией штаммов-деструкторов, а также сложность наработки бактериального препарата на их основе (требуется сложное аппаратурное оформление). Кроме того, не предусмотрена предварительная активация ассоциации нефтеокисляющих штаммов-деструкторов.

Задачей данного изобретения является сокращение продолжительности выделения аборигенных нефтеокисляющих микроорганизмов-деструкторов, упрощение технологии наработки биомассы штаммов-деструкторов.

Суть способа: производится отбор проб с нефтезагрязненных почвы и грунтов и выделение углеводородокисляющих микроорганизмов из образца конкретного участка нефтезагрязненной земли. Далее проводится активация полученной ассоциации с использованием смеси биодобавок биотрина и спиртовой барды, взятых в соотношении 1:1 в качестве фактора роста.

Известно, что информация на деструкцию нефти и нефтепродуктов в основном закодирована в плазмидах бактериальных клеток [Ягафарова Г.Г. Разработка биотехнологии очистки почвы и воды от некоторых хлорфенольных соединений и углеводородов нефти: Дис. на соискание уч. ст. д-ра технических наук. - Уфа, 1994]. Учитывая, что в число ассоциации аборигенных микроорганизмов будут входить как психрофильные, так мезафильные и термофильные микроорганизмы, селекция микроорганизмов не проводилась, а наработка биомассы осуществлялась при 25-30°С.

Способ осуществляется следующим образом.

На первом этапе работ проводится отбор образцов нефтезагрязненных почв и грунтов, выделение микроорганизмов-деструкторов нефти и нефтепродуктов из числа диких штаммов.

Основные операции по отбору проб осуществляются согласно ГОСТ 17.4.3.01-83 «Охрана природы. Почвы. Общие требования к отбору проб».

Для выделения микроорганизмов-деструкторов нефти и нефтепродуктов используют жидкую питательную среду Маккланга следующего состава: NaNO3 - 2,0 г/л; КН2PO4 - 1,0 г/л; MnSO4 - 0,013 г/л; MgSO4·7H 2O - 0,5 г/л; ZnSO4 - 0,002 г/л; Fe2 (SO4)3 - 0,001 г/л. Среду стерилизуют при 110°С в течение 30 мин.

Один грамм пробы почвы переносится в стерильную фарфоровую ступку, слегка увлажняется стерильной солевой средой и растирается до пастообразного состояния. Содержимое переносится в колбу на 250 мл (ступку и пестик ополоснуть солевой средой, перенося остаток в ту же колбу). Общий объем смеси доводится до 100 мл.

В качестве единственного источника углерода и энергии добавляют стерильный гексадекан (1 мас.%).

Культивирование проводят в качалочных колбах на термостатированной качалке при температуре 30°С и частоте вращения 100 мин-1 в течение 3 суток. Через трое суток отмечают видимые изменения в системе жидкой фазы - помутнение среды, появление пигмента, расслоение, изменение цвета и др.

Анализ состава накопительной культуры различных физиологических групп микроорганизмов производят путем высева определенных объемов воды на агаризованную среду по методу Коха.

На следующем этапе проводится активация нефтеокисляющих штаммов с помощью биогенных и минеральных добавок.

Активация проводится в жидкой минеральной среде Маккланга. Единственным источником углерода и энергии является нефть и/или нефтепродукты (гексадекан, дизельное топливо, мазут).

Для биологической стимуляции роста микроорганизмов и в качестве фактора роста используется смесь биодобавок: биотрин (ТУ 9291-001-00479994-95) и отход спиртового производства - барда, в соотношении 1:1 в количестве не менее 0,01 мас.%

Биотрин представляет собой сухой продукт, полученный микробиологическим синтезом из углеводородсодержащего сырья. Биотрин является эффективной балансирующей добавкой. Биотрин содержит в своем составе до 40-42% сырого протеина. В биотрине имеется 17 важнейших аминокислот, в том числе незаменимых, а также широкий спектр витаминов, макро- и микроэлементов. Биотрин является экологически чистым продуктом, не содержит токсических элементов.

Отход спиртового производства, барда - имеет в достаточном количестве легко растворимые азотистые соединения и полезные вещества: протеин (20-22%), жир (5-7%), клетчатках (13-18%), зола (7-8%), комплекс микроэлементов (кобальт, марганец, ванадий, железо и др.).

Процесс активации ассоциации штаммов-деструкторов проводят при температуре t=25-30°С и рН 7. Необходимо периодическое перемешивание.

На третьем этапе проводится наращивание необходимого количества биомассы полученной ассоциаци.

Глубинное культивирование ассоциации аборигенных микроорганизмов проводят в биореакторе, снабженном компрессором и мешалкой (например, 114.207.012.01.00.00 Ферментатор объемом 1 м3, материал 12Х18Н10Т ГОСТ 5632-73 с перемешивающим устройством). Поддерживают заданную температуру, рН, pO2. Культивирование проводят в полной минеральной среде Маккланга. В качестве источника углерода используют жидкие парафины, а при их отсутствии дизельное топливо или сырую нефть не менее 1 мас.% Процесс проводится при температуре t=25-30°С и рН 7 в течение 1-3 суток до достижения биомассы 0,3-0,5 мас.% При этом численность нефтеокисляющих микроорганизмов в готовой суспензии должна составлять не менее 109 клеток/мл. В процессе культивирования контролируют температуру ведения ферментации, накопление биомассы (методом КОЕ на 12 час культивирования и далее через каждые 6 часов), микрокопирование препарата ферментационной жидкости, рН.

По окончании процесса культивирования наработанную суспензию сливают в емкости и используют в качестве биопрепарата для обработки нефтезагрязненных объектов.

На 1 м2 нефтезагрязненных земель (содержание нефти до 13 мас.%) используют 1-1,5 л полученной суспензии аборигенных микроорганизмов. Для очистки нефтезагрязненных вод от нефти и нефтепродуктов суспензию ассоциации штаммов-деструкторов добавляют в биореактор для очистки сточной воды в количестве 3-5 об.%

Пример 1

С целью изучения процесса выделения аборигенных микроорганизмов из образцов нефтезагрязненных земель: Полигон Северный (Волжский р-н, п.Водино) - образец № 1 (общее содержание нетфи и нефтепродуктов 3 мас.%), Дружба-1 (Безенчукский р-н, 37-й км) - образец № 2 (общее содержание нетфи и нефтепродуктов 5 мас.%) или ЛПДС Самара (п.Просвет) - образец № 3 (общее содержание нетфи и нефтепродуктов 10 мас.%) были проведены эксперименты в стерильной жидкой минеральной среде Маккланга.

В качестве факторов роста в первой серии опытов добавляли биотрин в количестве 0,01 мас.%, во второй серии опытов добавляли спиртовую барду в количестве 0,01 мас.%, в третьей серии опытов добавляли смесь биодобавок (биотрин:барда = 1:1) в количестве 0,01 мас.%. В качестве единственного источника углерода и энергии добавляли стерильный гексадекан в количестве 1 мас.%. В опытные колбы № 1, № 2 и № 3 вносили по 1 г образцов техногеннозагрязненных земель № 1, № 2 и № 3 соответственно. Для сравнения ставили аналогичные опыты без добавления биодобавок.

Культивирование проводили в качалочных колбах на термостатированной качалке при температуре 30°С и частоте вращения 100 мин-1.

О нефтеокисляющей способности аборигенной микрофлоры судили по уменьшению содержания гексадекана, приросту численности микроорганизмов и изменению рН среды.

Содержание гексадекана определяли спектрофотометрически на приборе UR-20 при 1460 см-1 , предварительно экстрагируя его четыреххлористым углеродом.

Изменение рН культуральной жидкости определяли путем замера рН с помощью иономера И-130,2 М в начале и конце культивирования.

Численность микроорганизмов определяли чашечным методом Коха при высеве на агаризованную среду для гетеротрофных микроорганизмов (мясопептонный агар).

Результаты исследований представлены на фигурах 1-2 и таблице 1. После 3 суток культивирования в опытных колбах № 1, 2 и 3 с добавлением биотрина и с добавлением барды наблюдалось помутнение культуральной жидкости и появление пленки.

Как видно из фигуры 1, во всех опытных колбах с биотрином и бардой наблюдалось увеличение общего количества микроорганизмов и изменение рН среды в сторону подщелачивания (таблица 1). При этом наибольший прирост микроорганизмов наблюдался в серии опытов со смесью биодобавок биотрин:барда.

Содержание гексадекана снизилось в среднем до 0,1 мас.% сериях опытов с одной биодобавкой и до 0,07 мас.% в серии опытов со смесью биодобавок (фигура 2). В контрольных колбах изменений содержания гексадекана, количества микроорганизмов и рН среды не наблюдалось.

В опытных колбах без биодобавок незначительный прирост количества микроорганизмов наблюдался лишь на 3 сутки, содержание гексадекана снизилось незначительно (до 0,7-0,9 мас.%).

Таким образом, биотрин и спиртовая барда являются активными стимуляторами роста аборигеных нефтеокисляющих микроорганизмов.

Пример 2

Для установления оптимальной концентрации смеси биодобавок биотрин:барда для активации аборигенных микроорганизмов ставили следующий опыт. В жидкую минеральную среду Маккланга добавляли стерильную нефть конкретного месторождения (Самарская обл.) в количестве 1 мас.% и различные количества смеси биодобавок (биотрин:барда = 1:1): 0,01, 0,03, 0,05, 0,10 мас.%. Для биодеградации нефти вводили суспензию ассоциации аборигенных микроорганизмов, полученную в примере 1 (образец № 1) в количестве 3 об.%. Контролем служила колба без добавления биодобавок.

О биодеградации нефти судили по уменьшению ее количества, которое определяли спектрофотометрически на приборе UR-20 при 2923 см-1, предварительно экстрагируя ее четыреххлористым углеродом.

Как видно из результатов приведенных в таблице 2, степень биодеградации уже при содержании биодобавок 0,01 мас.% на 10% выше, чем без добавления биодобавок.

Таким образом, концентрация смеси биодобавок биотрина и барды в соотношении 1:1, равная 0,01 мас.%, уже достаточна для активации аборигенных микроорганизмов.

Пример 3

Для изучения процессов биодеградации нефти и нефтепродуктов были проведены эксперименты в жидкой минеральной среде Маккланга (стерильной). В качестве единственного источника углерода и энергии добавляли нефть конкретного месторождения (Самарская обл.), в количестве 1 мас.%. Для биодеградации нефти в среду вносили суспензию ассоциации активированных аборигенных микроорганизмов из нефтезагрязненных образцов ( № 1, № 2 или № 3) почв в количестве 3 об.%.

В качестве факторов роста добавляли смесь биодобавок биотрина и барды в соотношении 1:1 в количестве 0,01 мас.%. Культивирование проводили в качалочных колбах на термостатированной качалке при температуре 30°С и частоте вращения 100 мин-1. Для сравнения ставили аналогичные опыты без добавления биодобавок. Колбы с минеральной средой Маккланга, содержащие 1 мас.% нефти, но не инокулированные микроорганизмами, служили контролем.

О степени биодеградации нефти судили по уменьшению ее количества, а также косвенно по приросту численности бактерий и изменению рН среды.

Результаты исследований представлены на рисунках 1-3 и таблице 1.

Как видно из фигуры 3, биодеградация нефти произошла более чем на 90% во всех опытах с использованием активированной микрофлорой, в то время как в контрольных колбах естественная убыль нефти не превышала 5%.

При этом во всех опытных колбах наблюдалось увеличение общего количества микроорганизмов (фигура 4) и изменение рН среды в сторону подщелачивания (таблица 3). В контрольных колбах никаких изменений не наблюдалось.

Пример 4.

С целью исследования процесса биоразложения легких и тяжелых фракций углеводородов при помощи аборигенной микрофлоры с добавлением смеси биодобавок биотрина и барды в соотношении 1:1 были проведены эксперименты.

Для этого в серии опытов аборигенные штаммы микроорганизмов культивировали в стерильной минеральной среде со смесью биодобавок биотрина и барды в соотношении 1:1 (0,01 мас.%) с добавлением в качестве единственного источника углерода: гексадекан, дизельное топливо, нефть и мазут конкретного месторождения (Самарская обл.) в количестве 1 мас.%. Колбы без добавления биодобавок служили контролем.

Минеральную среду Маккланга (состав приведен выше) разливали по 50 мл в качалочные колбы объемом 250 мл и стерилизовали при 1 атм. 30 мин. Засевали из расчета 3% по объему суспензии аборигенных микроорганизмов. В качестве единственного источника углерода добавляли гексадекан, дизельное топливо, нефть или мазут в количестве 1 мас.%.

Условия культивирования описаны выше.

О биоразложении нефти и нефтепродуктов судили путем количественного анализа на спектрофотометре UR-20 при 2923 см-1 (нефти, дизельное топливо, мазут) и при 1460 см-1 (гексадекан). Предварительно нефть и нефтепродукты экстрагировали четыреххлористым углеродом

На фигуре 5 представлены результаты изучения зависимости биодеградации